L. and C. Chauvin, Laboratoire de Ploufragan-Plouzané) pour l'aide à l'analyse statistique et Cécile Adam (DGAl, Bureau des intrants et de la santé publique en élevage), pour ses précieux commentaires

P. Chatre, M. Haenni, D. Meunier, M. A. Botrel, D. Calavas et al., Prevalence and antimicrobial resistance of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli isolated from cattle between 2002 and 2006 in France, J. Food Prot, vol.73, pp.825-831, 2010.

, Performance Standards for Antimicrobial Disk and Dilution Susceptibility Tests for Bacteria Isolated From Animals, 2013.

M. Denis, C. Soumet, K. Rivoal, G. Ermel, D. Blivet et al., Development of a m-PCR assay for simultaneous identification of Campylobacter jejuni and C. coli, Lett. Appl. Microbiol, vol.29, pp.406-410, 1999.

E. , The European Union summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and food-borne outbreaks in 2016, EFSA J, vol.15, 2017.

E. Lehtopolku, M. Nakari, U. M. Kotilainen, P. Huovinen, P. Siitonen et al., Antimicrobial susceptibilities of multidrug-resistant Campylobacter jejuni and C. coli strains: In vitro activities of 20 antimicrobial agents, Antimicrob. Agents Chemother, vol.16, pp.1232-1236, 2010.

A. Thepault, G. Meric, K. Rivoal, B. Pascoe, L. Mageiros et al., Genome-Wide Identification of Host-Segregating Epidemiological Markers for Source Attribution in Campylobacter jejuni, Appl. Environ. Microbiol, vol.83, 2017.

. Encadré, Absence de détection du gène de résistance transférable erm(B) chez les Campylobacter de volailles en France en, 2016.

. Qin, Le coût biologique élevé de cette résistance chez C. jejuni était sans doute associé à la faible prévalence de cette résistance chez cette espèce, La résistance aux macrolides chez Campylobacter a jusqu'à peu été associée uniquement à des mutations chromosomiques dans les gènes cibles (ARNr 23S ou protéines L4 ou L22), 2014.

. Wang, 2014) ont récemment rapporté l'émergence, chez Campylobacter, du gène erm(B) déjà connu chez différentes espèces bactériennes à Gram positif et codant pour une ARNr-méthylase

. Liu, La résistance est transférable par transformation naturelle, et le gène confère le plus souvent une résistance de haut niveau aux macrolides. En Chine, le gène a été détecté dans des souches de C. coli ou plus rarement de C. jejuni, d'origine animale (poulets, canards, porcs) ou cliniques humaines. Liu et al. ont montré que la prévalence des souches de Campylobacter hébergeant erm(B) avait fortement augmenté dans certaines régions en Chine, Chez les souches chinoises de Campylobacter analysées, le gène erm(B) est situé soit sur un ilot génomique comportant d'autres gènes de résistance, soit sur un plasmide transférable, 2017.

. Florez-cuadrado, En Europe, à l'heure actuelle le gène erm(B) n'a été détecté que sur trois souches de C. coli d'origine animale (poulet et dindes) en Espagne, 2017.

. Florez-cuadrado, Là encore, le gène était situé sur des ilots génomiques de multi-résistance, 2016.

. Dans-ce-contexte-;-deng, Des travaux ayant révélé que le gène erm(B) peut parfois être présent dans une souche mais non exprimé, nous avons analysé toutes les souches disponibles pour 2016, qu'elles aient été analysées pour leur sensibilité (un isolat de C. jejuni par lot de poulets ou de dindes) ou non, 2015.

, Ainsi la recherche du gène erm(B) a été effectuée par PCR Taqman sur les lysats cellulaires obtenus à partir de 366 isolats de poulets et 419 isolats de dindes. Les amorces utilisées étaient celles définies par Muziasari, 2016.

F. Deng, J. Shen, M. Zhang, C. Wu, Q. Zhang et al., Constitutive and Inducible Expression of the rRNA Methylase Gene erm(B) in Campylobacter, Antimicrob Agents Chemother, vol.59, pp.6661-6664, 2015.

D. Florez-cuadrado, M. Ugarte-ruiz, G. Meric, A. Quesada, M. C. Porrero et al., Genome Comparison of Erythromycin Resistant Campylobacter from Turkeys Identifies Hosts and Pathways for Horizontal Spread of erm(B) Genes, 2017.

D. Florez-cuadrado, M. Ugarte-ruiz, A. Quesada, G. Palomo, L. Dominguez et al., Description of an erm(B)-carrying Campylobacter coli isolate in Europe, J Antimicrob Chemother, vol.71, pp.841-843, 2016.

D. Liu, F. Deng, Y. Gao, H. Yao, Z. Shen et al., Dissemination of erm(B) and its associated multidrug-resistance genomic islands in Campylobacter from, Vet Microbiol, vol.204, pp.20-24, 2013.

W. I. Muziasari, L. K. Pitkanen, H. Sorum, R. D. Stedtfeld, J. M. Tiedje et al., The Resistome of Farmed Fish Feces Contributes to the Enrichment of Antibiotic Resistance Genes in Sediments below Baltic Sea Fish Farms, Front Microbiol, vol.7, p.2137, 2016.

S. Qin, Y. Wang, Q. Zhang, M. Zhang, F. Deng et al., Report of ribosomal RNA methylase gene erm(B) in multidrug-resistant Campylobacter coli, J Antimicrob Chemother, vol.69, pp.964-968, 2014.

Y. Wang, M. Zhang, F. Deng, Z. Shen, C. Wu et al., Emergence of multidrug-resistant Campylobacter species isolates with a horizontally acquired rRNA methylase, Antimicrob Agents Chemother, vol.58, pp.5405-5412, 2014.